tehnicile de obtinere ale preparatului histologic

17
TEHNICILE DE OBTINERE ALE PREPARATULUI HISTOLOGIC

Upload: alecsandra-al

Post on 15-Apr-2016

46 views

Category:

Documents


0 download

TRANSCRIPT

Page 1: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

TEHNICILE DE OBTINERE ALE PREPARATULUI HISTOLOGIC

Page 2: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Nr. criteriu Etape Loc-Material Rezultate

1 Recoltare Biopsie-necropsie, act chirurgical

Esantion de tesut cu grosimea de 1cm

2 Fixare Fixatori simpli, amestecuri fixatoare

Conservarea structurilor

3 Spalare Apa distilata Indepartarea fixatorului4 Deshidratare Alcool, 70,80, 90 Pregatirea tesuturilor pentru

includere5 Clarificare Xilen sau alti solventi ai parafinei

6 Includere Xilen, parafina topita Se face in vederea obtineri unui bloc de parafina, in vederea

sectionarii structurii cu o grosime de 4-5 microni

7 Sectionare Microtom

8 Dizolvarea parafinei

Xilen Operatiuni facute in vederea executarii colorarii in solutii apoase de colorant, parafina

nefiind miscibila cu apa9 Hidratare Alcool 100,90,80,7010 Colorare Coloranti in solutie apoasa sau

alcool11 Deshidratare Alcool 70,80, 90 Operatiuni facute in vederea

montarii sectiunilor colorate, montarew ce se face in rasini

nemiscibile cu apa din solutia de colorant

12 Clarificare Xilen13 Montare Balsam de Canada, lamela

1.      ETAPELE OBTINERII PREPARATULUI HISTOLOGIC PERMANENT2.      REZULTATELE COLORARII, EXAMINAREA LA MICROSCOP A PREPARATELOR REALIZATE IN COLORATII DIFERITE

Page 3: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

TEHNICA EFECTUARII PREPARATELOR Examinarea morfo-functionala a celulelor se face pe preparate microscopice.Un preparat microscopic este reprezentat de proba de studiat asezata pe o lama de sticla si acoperita cu o lamela. -lama, se mai numeste si « lama port-obiect » cu laturi paralele si dimensiuni de 76/26mm si 1.5-2mm grosime. - lamela este din sticla , are forma patrata sau dreptunghiulara, cu dimensiuni variabile de 18/18, 22/22 sau 22/32mm si o grosime de 0.16-0.18mm. -Proba de studiat este reprezentata de un fragment de tesut sau o cantitate mica dintr-un lichid corporal, aduse prin sectionare, respectiv etalare la o grosime de cativa microni. ; la aceasta grosime, lumina strabate proba-(transiluminare)-permitand studierea celulelor la microscopul optic. .

In functie de starea celulelor de studiat, preparatele microscopice se clasifica in :1.    Preparate proaspete , temporare sau extemporanee2.    Preparate permanente sau durabile, care permit un studiu amanuntit al celulelor pe

piese fixate si colorate; ele rezista in timp si se pot realiza prin:a)-metoda efectuarii sectiunilor fineb)-metoda etalarii materialului biologic in monostrat (frotiu, amprente de organ)

Page 4: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

1.    Preparatele proaspete, temporare sau extemporanee,  le realizam atunci cand vrem sa studiem structura unui tesut sau organ in stare vie.In acest scop se recolteaza din organismul animal in timpul vietii (biopsie) un fragment foarte subtire de organ sau tesut pe care-l disociem pe lama intr-un lichid natural sau artificial, favorabil mentinerii vietii celulelor in timpul examinarii (plasma, limfa, lichid amniotic, ser fiziologic). Acoperim apoi preparatul cu o lamela ale carei margini le lipim cu parafina topita, pentru a evita

uscarea tesutului.Acest tip de preparat se mai foloseste si in studiul culturilor de tesuturi. Pe astfel de preparate

proaspete extemporanee, putem examina celulele sau elementele tesutului respectiv necolorate sau  colorate

printr-o metoda numita coloratie vitala.In metoda coloratiei vitale se intrebuinteaza diferite substante colorante putin toxice, care nu altereaza viata celulelor.Colorantii vitali se impart in :-   Colorantii vitali bazici-   Colorantii vitali aciziExamenul in stare vie sau proaspata are marele avantaj de a permite studiul celulelor in viata, de a

urmari diferite aspecte functionale ale acestora in desfasurarea lor, de a studia unele aspecte ale dinamicii celulare.Putem observa :-miscarea cililor, miscarea ameboida-contractilitatea, fagocitoza, fecundatia, segmentarea ovulului.

Page 5: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic
Page 6: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Cu toata simplitatea si avantajul pe care-l ofera acest procedeu, examenul in stare proaspata are aplicativitate restransa. Marele dezavantaj al acestei metode este alterarea tesutului de examinat.De aceea s-a ajuns la necesitatea de a avea preparate microscopice durabile, permanente care sa permita un studiu amanuntit si de lunga durata pe piese conservate si colorate.

2. Preparate permanente sau durabilea)-metoda efectuarii sectiunilor fineSectiunea este un preparat permanent in care se urmareste mentinerea tesuturilor cat mai asemanatoare cu aspecutul lor din timpul vietii si durabilitatea in timp.Obtinerea sectiunilor necesita efectuarea unor timpi operatori succesivi, fiecare dintre ei avand o influenta hotartaoare asupra reusitei finale. In ordinea executarii lor acestia sunt:Ø                        -recoltareaØ                        -fixareaØ                        -spalareaØ                        -decalcifierea (in cazul tesuturilor dure)Ø                        -includereaØ                        -sectionareaØ                        -aplicarea sectiunilor pe port-obiectØ                        -colorareaØ                        -montareaØ                        -etichetarea

Page 7: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Recoltarea si orientarea pieselor Fragmentele de organe sau tesuturi trebuiesc recoltate in timpul vietii,

(printr-o interventie chirurgicala, cand se obtine o piesa operatorie, fie printr-un act operator mai redus, biopsie, cand se obtine un mic fragment de tesut, fragment bioptic) sau imediat dupa moartea animalului, pentru a evita modificarile cadaverice. Apoi, fara a le deforma sau strivi, sunt taiate la o gro sime de 2-3 mm si orientate astfel incat sa permita un studiu cat mai complet. (Ex sectiune prin colon, nu vom face sectiunile longitudinal, sa prindem doar epiteliul de acoperire, ci transversal sa prindem toate straturile). Piesa de material bioptic trebuie sa aiba fete plane si paralele, sa nu aiba grosime mai mare de 1-4 mm, pentru a facilita patrunderea rapida a fixatorului si a evita aparitia alterarilor post-mortem.

Recoltarea se face : -pe o placa de pluta sa u PVC -cu pense fine pentru a nu strivi preparatul -fasonarea piesei se face cu lame ascutite degresate ( daca

tesutul recoltat este moale, de exemplu SNC, iar fasonarea poate produce strivirea pieselor, se vor fixa fragmente mai mari de tesut, apoi se fasoneaza).

Page 8: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Fixarea Reprezinta un timp obligatoriu  in realizarea preparatelor permanente. Are

ca scop conservarea constituientilor celulari intr-o stare cat mai apropiata de cea din timpul vietii, conservand forma, structura si compozitia chimica precum si raporturile reciproce existente in stare vie si pregatirea lor in vederea manevrelor ulterioare (includere, colorare). Fixarea omoara si imobilizeaza celulele intr-un anume moment al activitatii lor.

Aceasta depinde in primul rand de proteine, principalii constituienti ai materiei vii, ceea ce inseamna ca un bun fixator histologic trebuie sa fie in primul rand un bun fixator al proteinelor. Mecanismul fixarii proteinelor nu este perfect cunoscut. Se cunoaste faptul ca fixatorii histologici determina o coagulare sau o insolubilizare a proteinelor si in majoritatea cazurilor un anumit grad de polimerizare a structurilor organice. O consecinta importanta a acestei coagulari a proteinelor este ca se realizeaza blocajul reactiilor enzimatice, impiedicand astfel digestia autolitica a tesuturilor.

Fixarea trebuie privita diferit in functie de : -gradul conservarii morfologice pe care dorim sa-l obtinem : fixarea se realizeaza

in mod diferit pentru microscopia electronica fata de cea fotonica ; in primul caz trebuiesc pastrate relatiile intre constituientii celulei la scara moleculara.

-de natura constituientilor chimici ce trebuie conservati : anumite structuri macromoleculare sunt mai usor de conservat (de exemplu proteinele), in timp ce altii sunt foarte labili si dificil de fixat, (oligozaharidele).

-de volumul fragmentelor tisulare ce trebuiesc conservate : fixarea unui frotiu celular este diferita de cea a unui organ (de exemplu encefalul) unde patrunderea fixatorului devine elementul esential al fixarii.

-de tipul reactiilor histochimice sau de culoarea pe care dorim sa le efectuam : fixarea este diferita cand folosim o coloratie simpla, topografica sau cand incercam decelarea lipidelor sau enzimelor.

Page 9: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Un bun fixator trebuie sa indeplineasca urmatoarele conditii :-   sa aiba putere mare de patrundere-   sa produca o cat mai mica retractie a pieselor, evitand modificarea taliei, formei, raporturilor dintre celule-   sa nu determine aparitia de artefacte, adica modificari ale piesei care nu corespund realitatii (retractari, umflari, vacuolizari)-   sa confere o anumita consistenta piesei-   sa permita colorarea pe care dorim sa o efectuam-   sa nu fie toxic pentru cel care il manevreaza-   sa depaseasca piesa ca volum de 30-40 de ori.

Fixarea se face cu agenti fizici sau chimici :Agentii fizici utilizati : caldura, desicarea sau congelareaAgentii chimici sunt cel mai frecvent utilizati, fie ca fixatori simpli, fie sub forma de amestecuri fixatoare.

Nici un fixator citologic nu este universal si de aceea arta fixarii consta in alegerea corecta a fixatorului in raport cu ceeactiunea.a ce trebuie studiat. Un fixator simplu, este greu sa indeplineasca toate calitatile necesare unei bune fixari, motiv pentru care se recurge la amestecuri fixatoare in care diversi compusi isi completeaza reciproc

Page 10: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Tipuri de fixatori

Exemple Mod de actiune

Avantaje Dezavantaje

Aldehidele

Formaldehida (solutie standard de 10% formaldehida tamponata, tamponarea previne aciditatea ce favorizeaza autoliza)

Tesuturile sunt fixate prin polimerizarea proteinelor.

Are putere de penetrare buna.Nu modifica structura proteinelor, acestea pastrandu-si antigenitatea, metoda are aplicabilitate in tehnici imunologice

Actiune lenta

Glutaraldehida Actiune rapida. Da cele mai bune detalii citoplasmatice globale si nucleare. Folosita in microscopia electronica.

Penetrare slaba

Fixatori mercuriali

Clorura de mercur -intra in alcatuirea amestecului fixator Zenker

necunoscut

Detalii nucleare excelente, actioneaza rapid

Penetrare slaba, produce rigiditate

Alcoolii Metanol, Etanol, folositi in amestecuri, alcool-formol, amestecul Carnoy

Denaturare proteine

Actiune rapida, detalii nucleare bune.Folositi in special la frotiuri

Rigiditate, Fragilitate

Agentii oxidanti

Permanganati, Dicromati, Tetraoxid de osmiu

Polimerizare proteine

Aplicatii specializate, se folosesc rar

Denaturare severa

Picratii Acid picric- sol Buion

Necunoscut

Detalii nucleare bune, nu da rigiditate marcata

Page 11: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Reguli generale ale fixarii :-Evitarea alterarilor autolitice- fixarea trebuie facuta cat mai repede posibil dupa

recoltarea materialului biologic.-Spalarea fragmentelor, intr-o solutie fiziologica. Nu se foloseste apa, deoarece

produce umflarea tesuturilor.-Evitarea uscarii tesuturilor, manevrele se fac in mediu umed.-Facilitarea la maxim a penetrarii fixatorului in organe si tesuturi. Se vor utiliza

vase mari, cu Fundul plat si dop rodat, nu se va lasa sange sau mucus la suprafata piesei, se

agita din timp in timp sa nu se lipeasca de peretii flaconului.-Piesele se introduc in amestecul fixator ambalate in tifon si purtand numar de

identificare.-Durata fixarii, variaza in functie de compozitia agentului fixator, structura,

dimensiunea pieselor.-Un fixator odata folosit nu se va folosi la fixarea altei piese.

Tratamentul pieselor imediat dupa fixareCand se alege un fixator, se are in vedere structura ce va fi studiata, stiind ca

anumite tesuturi si componente celulare implica folosirea anumitor fixatori sau contraindica folosirea

altora.Pentru glicogen nu se folosesc fixatori aposi.Pentru fixarea grasimilor nu se folosesc solventi ai acestora.

Page 12: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Spalarea Este operatiunea in care se opreste fixarea si se indeparteaza excesul de fixator si a unor eventuale structuri false ce pot apare in preparat datorita unor defecte de fixare. Se poate face cu diferite substante in functie de fixatorul folosit :-apa curgatoare pentru formaldehida-alcool pentru fixatori cu dicromat de potasiu-alcool absolut pentru fixatorii pe baza de alcool, amestecul Carnoy La alcoolul in care spalam piesa se adauga in mod obligatoriu si solutie iod iodurata sau tinctura de iod pentru a se elimina precipitatele pe care le formeaza sublimatul in tesuturi in timpul fixarii. Includerea Este etapa in care piesa , odata fixata, este procesata intr-o forma care sa permita efectuarea de sectiuni subtiri. Aceasta se realizeaza prin inglobarea si impregnarea pisei cu o substanta solidificabila, rezultand un bloc cu consistenta solida, omogena. Cel mai frecvent e utilizata parafina, cu o densitate asemanatoare tesuturilor, ce permite obtinerea de sectiuni cu grosimi de 3-10microni. Alte substante folosite : celoidina, gelatina, iar pentru microscopia electronica rasinile sintetice.Includerea la parafina- etape :-deshidratarea-clarificarea-impregnarea cu parafina-includerea propriu zisa

Page 13: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Deshidratarea este operatiunea in care se indeparteaza apa din piesa. Acest pas este necesar deooarece parafina nu e solubila in apa.De obicei de face cu alcool in bai de concentratii succesiv crescute (70%, 95% si 100%). In acest fel alcoolul inlocuieste treptat apa din tesuturi.Volumul alcoolului din baia de deshidratare trebuie sa fie de aproximativ 10 ori mai mare decat volumul piesei.Durata depinde marimea fragmentelor, in medie de 2-3 ore pentru fiecare baie de alcool. Ultima baie trebuie sa se faca intotdeauna in alcool absolut nou.

Clarificarea, este operatiunea in care alcoolul din piesa este inlocuit cu o substanta care are proprietatea de a fi miscibila atat cu alcoolul cat si cu parafina.Dintre aceste substante mentionam xilenul, benzenul, toluenul, cloroformul. Cel mai folosit e xilenul.Clarificarea consta , de asemenea in bai succesive de aceeasi substanta , de obicei 3 bai de xilen cu durata de 3-6 ore in functie de marimea fragmentului.La sfarsitul operatiunii de carificare, piesa devine translucida.Impregnarea la parafina- se utilizeaza parafina cu punct de topire 56°C, care e mentinuta la aceasta temperatura printr-un termostat.Se trec piesele prin cel putin 3 bai de parafina pentru a se indeparta orice urma de solvent din piese.Includerea propriu –zisa, sau turnarea blocului, consta in inglobarea pieselor in parafina noua, neutilizata, turnata intr-o forma ; frecvent se folosesc barele paralele Leuckhardt. Piesa se introduce in parafina topita cu fata care va fi sectionata spre fundul formei. Prin racire la temperatura camerei blocul se solidifica si va putea fi sectionat.Exista inconveniente pentru preparatele ce contin mult tesut conjuntiv, care se sectioneaza greu. Recomandat a se folosi incluziune in celoidina.

Page 14: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

SectionareaPiesele histologice pot fi sectionate :a)-imediat dupa fixare, fara a fi incluseb)-imediat dupa ce au fost incluse

a)Sectionarea piesei neincluse se face in mod curent in urma intaririi ei prin congelare sub actiunea vaporilor de bixid de carbon, proveniti dintr-o bomba mecanica, pusa in legatura printr-un ventil cu un microtom special pentru acest scop, numit microtom pentru sectiuni de gheata.Sectionarea la gheata este foarte expeditiva si este folosita in histologie, in histochimie, histoenzimologie. Cu ajutorul ei se usureaza punerea in evidenta a unor componenti celulari : grasimi, enzime, care dispar in metodele de incluziune. Sectiunile sunt in general groase, mai mari de 10 microni.

b)Sectionarea pieselor incluse la parafina se realizeaza cu ajutorul unui alt tip de microtom. Acesta are la baza un cutit foarte ascutit prevazut cu un mecanism care se deplaseaza de-a lungul blocului inclus in parafina, avansand cu o distanta standard. Prin miscarea repetata a blocului in lungul cutitului se obtin sectiuni seriate, de cativa microni (obisnuit 4-6), care adera una de alta,formand o panglica.

Page 15: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Etalarea Este o operatiune prin care sectiunile se aplica pe lama portobiect bine degresata. Pe lama de sticla se aplica o picatura de albumina Mayer sau solutie apoasa de gelatina si se intinde bine de-a lungul lamei. Din panglica de sectiuni se taie fragmente de 3-4 care se aplica cu fata lucioasa pe suprafata unsa cu albumina Mayer a lamei. Se picura apa distilata la una din extremitatile panglicii astfel incat sectiunile sa pluteasca, apoi se aseaza pe o platina incalzitoare, unde, in cateva secunde, sectiunile se descretesc si se intind complet. Lamele se tin apoi, 24 de ore la termostat, 37°C, pentru ca sectiunile sa se usuce si sa se lipeasca. Astfel procesate, preparatele permanente pot fi pastrate necolorate, ferite de praf si Lumina timp indelungat.

Alcool-formol Alcool 96, 90ccFormol comercial , 10cc

Durata fixarii 24h-cateva zile

Lichid Bouin Acid picric, 75ccFormol, 20ccAcid acetic glacial, 5cc

Durata optima, cateva zile

Potrivit pentru toate lucrarile curente, dar grasimile, lipidele, aparatul reticular nu sunt conservate

Lichid Zenker Bicromat de K, 2,5gSulfat de Na, 1gSublimat coroziv, 5gApa distilata, 95ccAcid acetic glacial, 5cc

Durata fixarii, 8-24h Fixator general

Lichid Carnoy Alcool absolut, 60gCloroform, 30gAcid acetic, 10g

Durata fixarii, 1-3h Dupa acest fixator se poate folosi orice coloratie. Fixeaza bine nucleul si mentine glicogenul in citoplasma

Page 16: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Acid osmic Fixeaza bineGrasimea, mielina, diferite

granule, profermentul din celulele glandulare se coloreaza in negru, ele devenind insolubile in dizolvantii obisnuiti

Fixeaza foarte bine protozoare, globule sanguine

Patrundere scazuta-piesele trebuie sa fie subtiri

Iritant pentru conjunctive, bronhii, trebuie manipulat cu precautie

Alcool etilic Conserva corpii Nissl din celula nervoasa, fibre conjunctive din vase si  glande.

Patrunde greu, produce contractia tesuturilor, impiedica colorarea

Formolul Conserva lipidelePermite orice colorarePerfect pentru taiere la

microtomul prin congelare

Deterioreaza citoplasmaSe opune impregnarii argenticePentru a evita se adauga creta

Alcool metilic pur Pentru elementele sg,(frotiu) fixator rapid 3-5min

Agentii Fixatori

Page 17: Tehnicile de Obtinere Ale Preparatului Histologic

Decalcifierea Pentru a efectua preparate din piese ce contin in ele formatiuni impregnate cu saruri de calciu, cum sunt oasele sau dintii este necesar dupa fixare sa procedam la decalcifierea acestora. Dupa fixare, spalam bine piesa in apa curgatoare, respectiv cu alcool, apoi o trecem printr-o serie de alcooluri cu concentratii crescande pana la 96°, apoi din nou in apa. Apoi se trece la decalcifiere. Piesele sunt trecute prin cateva bai de solutie decalcifianta pana se demineralizeaza.. Dupa decalcifiere, piesele sunt trecute pentru neutralizare printr-o solutie de sulfat de Na 5% timp de 24h, apoi bine spalate in apa curgatoare, 48h. Unii fixatori, Bouin, Zenker, actioneaza si ca solutii decalcificatoare dar doar la piese foarte mici. Consideram incheiata decalcificarea cand piesele sunt moi si se pot taia usor. Dupa decalcificare, piesa e supusa tehnicii de impregnare ca orice alt tesut necalcificat.