quorum sensing and response
DESCRIPTION
IMPLICAŢIILE FENOMENULUI DE QUORUM SENSING AND RESPONSE ÎN EXPRIMAREA COORDONATĂ A FACTORILOR DE PATOGENITATE ŞI VIRULENŢĂ LA TULPINI DE STAPHYLOCOCCUS AUREUS ŞI PSEUDOMONAS AERUGINOSATRANSCRIPT
1
Universitatea din București, Facultatea deBiologie
TEZĂ DE DOCTORAT
IMPLICAŢIILE FENOMENULUI DE QUORUM SENSING AND RESPONSE ÎN EXPRIMAREA COORDONATĂ A FACTORILOR DE
PATOGENITATE ŞI VIRULENŢĂ LA TULPINI DE STAPHYLOCOCCUS AUREUS ŞI PSEUDOMONAS AERUGINOSA
-REZUMAT-
CONDUCĂTOR ȘTIINŢIFIC DOCTORAND PROF. UNIV. DR. VERONICA STOIAN ANI IOANA COTAR
București 2009
2
Cuprins
PARTEA TEORETICĂ - Staphylococcus aureus şi Pseudomonas aeruginosa - modele de studiu al mecanismelor de reglare prin quorum-sensing a expresiei factorilor de virulenţă la bacteriile Gram-pozitive, şi respectiv Gram-negative Abrevieri Introducere 1 I. Caracterizare generală a modelelor bacteriene (S. aureus şi Ps. aeruginosa) 2
I.1. S. aureus şi Ps. aeruginosa – încadrare taxonomică 2 I.2. Patogeneza infecţiilor determinate de Staphylococcus aureus 3
I.2.1. Colonizare 4 I.2.1.1. Receptine asociate suprafeţei celulare 5 I.2.1.2. Receptine secretate 10 I.2.1.3. Polizaharide extracelulare 11
I.2.2. Internalizare 11 I.2.3. Invazie şi diseminare sistemică 12
I.2.3.1. Invazine 14 I.2.4. Toxigeneză 16
I.2.4.1. Hemolizine 16 I.2.4.2. Superantigene 19 I.2.4.3. Sindroame determinate de superantigene 22
I.2.4.3.1. Sindromul de şoc toxic 22 I.2.4.3.2. Toxiinfecţii alimentare 22 I.2.4.3.3. Sindromul pielii pătate 22
I.3. Rezistenţa la antibiotice a tulpinilor de S. aureus 23 I.4. Patogeneza infecţiilor determinate de Ps. aeruginosa 24
I.4.1. Colonizare 27 I.4.1.1. Adezine, capsulă 27
I.4.2. Invazie şi diseminare 29 I.4.3. Toxigeneză 31
I.5. Rezistenţa la antibiotice a tulpinilor de Ps. aeruginosa 33 II. Mecanismele de quorum-sensing and response (QS) la S. aureus şi Ps. aeruginosa 35 II.1. Moleculele implicate în mecanismul de QS 38 II.2. Clasificarea sistemelor de quorum-sensing bacterian 40 II.3. Fenomenul QS la bacteriile Gram-negative 41
II.3.1. Mecanismele QS la Pseudomonas aeruginosa 43 II.3.1.1. Sistemul QS las 43 II.3.1.2. Sistemul QS rhl 44 II.3.1.3. Molecula de semnalizare PQS 46 II.3.1.4. Mecanisme complexe de reglare ale sistemelor QS 48
II.3.2. Rolul QS şi a moleculelor semnal în patogeneza infecţiilor cu Ps. aeruginosa 49 II.3.2.1. Contribuţia QS în controlul suprainfecţiilor arsurilor 51
3
II.3.2.2. Rolul QS în controlul infecţiilor pulmonare 52 II.3.2.3. Rolul QS în reglarea biofilmelor cu Ps. aeruginosa 54
II.4. Fenomenul de quorum sensing la bacteriile Gram-pozitive 55
II.4.1. Mecanismul QS la S. aureus – reglatorul agr 56 II.4.2. Reglatorii expresiei factorilor de virulenţă la S. aureus 59
II.4.2.1. Reglatorul global sar 59 II.4.2.2. Reglatorul global sae 60 II.4.2.3. Sistemul ArlRS 60 II.4.2.4. Sistemul SrrAB 61 II.4.2.5. Reglatorul Rot 62 II.4.2.6. Factorul alternativ sigma 63
III. Modalităţi de atenuare a virulenţei şi patogenităţii bacteriene prin blocarea QS 63 III.1. Interferenţe cu mecanismele de QS - concept terapeutic în infecţiile cu Ps. aeruginosa 64
III.1.1. Inhibiţia sintezei AHL 64 III.1.2. Inhibiţia diseminării semnalului AHL 65 III.1.3. Inhibiţia receptării semnalului AHL 66 III.1.4. Inhibitorii QS exprimaţi de organismele superioare 67 III.1.5. Interferenţe cu mecanismele de QS - concept terapeutic in infecţiile cu S. aureus 68
III.2. Probiotice – potenţiali inhibitori ai QS 68
PARTEA EXPERIMENTALĂ - Implicaţiile fenomenului de quorum sensing and response în exprimarea coordonată a factorilor de patogenitate şi virulenţă la tulpini de Staphylococcus aureus şi Pseudomonas aeruginosa IV. Materiale şi metode 71
IV.1. Caracterizarea fenotipică şi genotipică a tulpinilor de S. aureus şi Ps. aeruginosa analizate 71
IV.1.1. Tulpini bacteriene patogene 71 IV.1.2. Determinarea spectrului de sensibilitate la antibiotice prin metode fenotipice standardizate
(CLSI, 2009) 80
IV.1.2.1. Determinarea fenotipurilor de rezistenţă specifice la tulpinile de S. aureus 81 IV.1.2.2. Determinarea fenotipurilor de rezistenţă specifice la tulpinile de Ps. aeruginosa 82
IV.1.3. Caracterizarea fenotipică a factorilor de virulenţă solubili (toxine formatoare de pori, exoenzime) 84 IV.1.4. Caracterizarea genotipică a factorilor de virulenţă 86
IV.1.4.1. Extracţia ADN 86 IV.1.4.1.1. Determinarea purităţii şi a concentraţiei ADN prin metoda spectrofotometrică 86
IV.1.4.2. Detectarea prin PCR a genelor de virulenţă la tulpinile de S. aureus 87 IV.1.4.3. Detectarea prin PCR a genelor de virulenţă la tulpinile de Ps. aeruginosa 91
IV.2. Caracterizarea sistemelor de QS la tulpinile de S. aureus şi Ps. aeruginosa 94
IV.2.1. Determinarea prin PCR a tipului de sistem QS agr la tulpinile de S. aureus 94 IV.2.2. Caracterizarea genotipică a reglatorilor genelor de virulenţă la tulpinile de S. aureus 94 IV.2.3. Caracterizarea genotipică a sistemelor QS las şi rhl la tulpinile de Ps. aeruginosa 95
IV.3. Stabilirea prin metode fenotipice a influenţei probioticelor asupra tulpinilor patogene 97
4
IV.3.1. Tulpini de probiotice utilizate 97 IV.3.2. Testarea influenţei probioticelor asupra curbei de creştere a tulpinilor patogene prin metoda
turbidimetrică 98 IV.3.3. Cuantificarea influenţei probioticelor asupra aderenţei tulpinilor patogene la substratul inert
prin testul producerii de slime 99 IV.3.4. Studiul influenţei probioticelor asupra expresiei unor factori solubili de virulenţă la tulpinile
patogene 99 IV.4. Evidenţierea prin metode genetice a efectelor inhibitorii ale probioticului asupra expresiei QS la tulpinile de S. aureus şi Ps. aeruginosa 100
IV.4.1. Extracţia ARN total la tulpinile de S. aureus şi Ps. aeruginosa 100 IV.4.2. Sinteza ADNc prin revers-transcrierea ARN total 101 IV.4.3. Real-time - PCR – versus PCR standard 103
IV.4.3.1. Tipuri de experimente real-time PCR 104 IV.4.3.1.1. Real-time PCR cu sonde moleculare marcate fluorescent 105 IV.4.3.1.2. Real-time PCR cu colorantul fluorescent SYBR Green I 108
IV.4.3.2. Parametri monitorizaţi în experimentele real-time PCR 110 IV 4.3.3. Real-time qRT-PCR – caracteristici generale 111 IV.4.3.4. Tipuri de cuantificare a expresiei genice în real-time qRT-PCR 112
IV.4.3.4.1. Cuantificarea relativă a expresiei genei agr la tulpinile de S. aureus prin real-time qRT-PCR cu sonde MGB şi SYBR Green I 117
IV.4.3.4.2. Cuantificarea relativă a expresiei genelor QS la tulpinile de Ps. aeruginosa prin real-time qRT-PCR cu SYBR Green I 120
V. Rezultate şi discuţii 125 V.1. Caracterizarea fenotipică şi genotipică a tulpinilor de S. aureus şi Ps. aeruginosa 125 V.1.1 Pattern-urile de rezistenţă la antibiotice la tulpinile de S. aureus şi Ps. aeruginosa 127
V.1.1.1. Rezistenţa la meticilină şi MLSb a tulpinilor de S. aureus 127 V.1.1.2. Rezistenţa la antibioticele beta-lactamice a tulpinilor de Ps. aeruginosa 131
V.1.2. Expresia fenotipică a factorilor de virulenţă solubili 138
V.1.2.1. Spectrul de factori de virulenţă prezenţi la S. aureus 138 V.1.2.2. Spectrul de factori de virulenţă prezenţ la Ps. aeruginosa 140
V.1.3. Caracterizarea genotipică a factorilor de virulenţă 144 V.1.3.1. Gene de virulenţă detectate prin PCR la tulpinile de S. aureus 144 V.1.3.2. Gene de virulenţă detectate prin PCR la tulpinile de Ps. aeruginosa 156
V.2. Caracterizarea moleculară a sistemelor de QS la tulpinile de S. aureus şi Ps. aeruginosa 168 V.2.1. Caracterizarea moleculară a sistemului QS agr şi a reglatorilor genelor de virulenţă la tulpinile
de S. aureus 168
V.2.2. Caracterizarea moleculară a sistemelor QS las şi rhl la tulpinile de Ps. aeruginosa 176
V.3. Selectarea şi caracterizarea tulpinii de probiotic cu rol inhibitor asupra expresiei fenotipice a factorilor de virulenţă la tulpinile patogene studiate 180
5
V.4. Evidenţierea prin metode fenotipice a efectelor inhibitorii ale tulpinii de probiotic asupra tulpinilor patogene 180
V.4.1. Influenţa probioticului asupra curbei de creştere a tulpinilor de S. aureus şi Ps. aeruginosa 181 V.4.2. Influenţa probioticului asupra expresiei unor factori solubili de virulenţă şi a aderenţei la
substrat inert a tulpinilor de S. aureus şi Ps. aeruginosa 181 V.5. Stabilirea prin metode genetice a efectelor inhibitorii ale probioticului asupra expresiei QS la tulpinile de S. aureus şi Ps. aeruginosa 187
V.5.1. Cuantificarea relativă prin real-time qRT-PCR a expresiei genei agr la tulpinile de S. aureus cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic comparativ cu tulpinile normale 187
V.5.2 Cuantificarea relativă prin real-time qRT-PCR a expresiei genelor QS la tulpinile de Ps. aeruginosa cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic comparativ cu tulpinile normale 190
VI. Concluzii 196 VII. Bibliografie selectivă 197 VIII. Anexe 212
6
PARTEA TEORETICĂ
Introducere
S. aureus şi Ps. aeruginosa sunt două dintre bacteriile cele mai frecvent izolate din
infecţiile nosocomiale, fiind patogeni oportunişti responsabili de infecţii severe la pacienţii
imunocompromişi. Emergenţa tulpinilor de S. aureus şi Ps. aeruginosa multirezistente la
antibiotice determină dezvoltarea de noi strategii pentru înţelegerea mecanismelor utilizate de
către aceste bacterii în diferite faze ale procesului infecţios în scopul realizării unui control mai
eficient al infecţiilor determinate de aceste bacterii. Ps. aeruginosa şi S. aureus realizează o
expresie coordonată a anumitor factori de virulenţă ca răspuns la contactul cu celulele
eucariote ale gazdei sensibile, rezultatul interacţiunilor bacterie -gazdă fiind influenţat de
densitatea celulară şi reglat prin QS, sistem de semnalizare chimică implicat în reglarea unor
procese fiziologice extrem de variate dependente de densitatea celulară (bioluminiscenţa,
sinteza de factori de virulenţă, sporulare, transfer plasmidic). Unul dintre cele mai importante
roluri ale mecanismelor de QS, atât la bacteriile Gram-negative, cât şi la cele Gram-
pozitive este reprezentat de reglarea expresiei coordonate a factorilor de virulenţă şi
evitarea mecanismelor de apărare antiinfecţioase ale gazdei [1].
Tratamentele tradiţionale ale bolilor infecţioase bazate pe compuşi cu acţiune
microbicidă sau microbiostatică au condus, datorită suprautilizării, la selectarea şi emergenţa
fenomenelor de rezistenţă şi multirezistenţă la antibiotice. Descoperirea sistemelor de QS, a
permis deschiderea unor noi perspective de tratament şi prevenire a infecţiilor bacteriene, prin
găsirea unor blocanţi ai mecanismului de QS bacterian, reprezentaţi de compuşi naturali sau
obţinuţi prin sinteza chimică [2].
În acest context, studiul de faţă are drept scop evaluarea unei strategi i de atenuare a
patogenităţii şi virulenţei bacteriene la tulpini de Ps. aeruginosa şi S. aureus izolate din clinică,
bazate pe utilizarea de antagonişti ai QS bacterian reprezentaţi de molecule solubile produse
de tulpini de Lactobacillus cu potenţial probiotic.
7
I.1. Caracterizare generală a modelelor bacteriene (S. aureus şi Ps. aeruginosa)
S. aureus este un patogen important, mai ales ca urmare a emergenţei în întreaga
lume a tulpinilor care sunt rezistente la toate antibioticele utilizate în clin ică (tulpinile MRSA,
VRSA – meticillin - and vancomycin-resistant Staphylococcus aureus) [4]. Având în vedere
importanţa şi incidenţa înaltă a infecţiilor invazive cu S. aureus meticilino-rezistent
(33,3% în 2008) (date furnizate prin participarea a 35 de spitale din ţară la reţeaua
europeană EARSS-(European Antimicrobial Resistance Surveillance System)
(www.earss.rivm.nl), găsirea unor noi strategii terapeutice pentru infecţiile stafilococcice
reprezintă o prioritate şi la nivel naţional.
Ps. aeruginosa reprezintă în România unul dintre agenţii oportunişti cu
prevalenţa cea mai mare dintre bacteriile Gram-negative implicate în etiologia infecţiilor
nosocomiale şi cea a infecţiilor severe la pacienţii imunodeprimaţi şi la cei cu dispozitive
protetice. Severitatea şi cronicizarea infecţiilor cu Ps. aeruginosa se datorează
rezistenţei multiple la antibiotice, precum şi abilităţii de a forma biofilme atât pe suprafeţe
abiotice (dispozitive medicale) cât şi biotice (ţesuturi) [6].
În acest context găsirea unor alternative terapeutice la utilizarea substanţelor
antimicrobiene reprezintă o necesitate pentru controlul infecţiilor asociate cu formarea de
biofilme determinate de Ps. aeruginosa sau de S. aureus [7].
I.2. Patogeneza infecţiilor determinate de Staphylococcus aureus
S. aureus reprezintă un patogen major care colonizează şi infectează atât pacienţii
spitalizaţi cu imunitate scăzută, cât şi indivizii imunocompetenţi din comunităţi. Fosele nazale
constituie rezervorul major pentru S. aureus [8]. Astfel, 20% dintre indivizi sunt colonizaţi
persistent la nivelul foselor nazale, 60% sunt purtători intermitenţi, în timp ce 20% nu sunt
niciodată purtători de S. aureus [8]. Statutul de purtător de S. aureus constituie un factor de risc
pentru dezvoltarea infecţiilor invazive [9]. Alte situsuri de colonizare ale S. aureus sunt
reprezentate de: pliuri ale pielii, perineu, axile, vagin şi tractul gastrointestinal [10].
S. aureus posedă cea mai largă varietate de mecanisme de virulenţă dintre toate
microorganismele patogene pentru om şi astfel reprezintă un model pentru studiul patogenezei
bolilor infecţioase. Patogenitatea S. aureus este multifactorială, fiind dependentă de: (1)
repertoriul bogat de factori de virulenţă pe care îi exprimă această specie bacteriană, (2)
imunitatea organismului gazdă, (3) factorii de mediu (dispozitive medicale de tipul cateterelor
8
intravasculare) şi (4) competiţia bacteriană [12]. Factorii de virulenţă sunt exprimaţi în mod
coordonat în cursul diferitelor etape ale infecţiilor pe care le determină la om [12, 13, 14].
S. aureus produce o diversitate de proteine secretate, ce aparţin la unul dintre
următoarele tipuri: receptine, toxine şi enzime. Principalele etape ale patogenezei infecţiilor cu
S. aureus sunt: (1) colonizarea, (2) internalizarea, (3) invazia şi diseminarea sistemică şi (4)
toxigeneza [11]. Atât infecţiile localizate, cum sunt abcesele de la nivelul ţesuturilor moi, cât şi
bolile sistemice ce pun în pericol viaţa, cum este septicemia, apar ca urmare a capacităţii
patogenului (1) de a se ataşa la ţesuturi sau celule, (2) de a scăpa de mecanismele imune
înnăscute şi dobândite ale gazdei, (3) de a produce enzime extracelulare şi exotoxine care
determină lezarea celulară şi tisulară favorizând diseminarea S. aureus în organismul gazdă
[14, 15].
I.3. Rezistenţa la antibiotice a tulpinilor de S. aureus
Rezistenţa la penicilinele stabile la penicilinaze a fost denumită în trecut rezistenţa la
meticilină. În prezent se foloseşte termenul MRSA (methicillin resistant Staphylococcus aureus)
sau S. aureus rezistent la oxacilină. Se cunosc două tipuri principale de mecanisme de
rezistenţă la meticilină a S. aureus: (1) mediat de gena cromosomală mecA, care specifică
sinteza unei proteine anormale de legare a penicilinei, denumită PBP2a sau PBP2' şi (2)
mecanisme mediate de sinteza unor beta-lactamaze [46]. Primul mecanism este cel mai
frecvent responsabil de apariţia pattern-ului de rezistenţă MRSA. Complexul genei mecA
conţine situsuri de inserţie pentru plasmide şi transpozoni, ceea ce facilitează achiziţia de gene
de rezistenţă şi la alte clase de antibiotice. Astfel, tulpinile MRSA frecvent prezintă rezistenţă
încrucişată la antibiotice non- -lactamice, cum ar fi: eritromicina, clindamicina, gentamicina,
trimetroprim-sulfametoxazol/ cotrimoxazol şi ciprofloxacin. [46]. Transferul orizontal al genei
mecA la tulpinile MSSA se pare că reprezintă cel mai important mecanism de răspândire a
rezistenţei la meticilină la tulpinile de S. aureus.
Rezistenţa S. aureus la macrolide poate fi datorată efluxului activ (codificat de gena
msrA) sau modificării ţintei ribozomale când apare mecanismul de rezistenţă MLSb (macrolide-
lincosamide-streptogramin B), care este codificat de genele erm (ermA sau ermC). Gena msrA
conferă tulpinilor purtătoare rezistenţă numai la macrolide şi la steptograminele de tip B [48].
Genele erm (ermA, ermB) codifică enzimele care conferă rezistenţa inductibilă sau constitutivă
la agenţii MLSb. Rezistenţa constitutivă la MLSb apare prin metilarea ARNr 23S, ceea ce
conduce la scăderea legării agenţilor MLSb la ribozomi. Tulpinile care prezintă rezistenţă
9
constitutivă la MLSb manifestă in vitro rezistenţă la toţi aceşti agenţi. Rezistenţa MLSb
inductibilă se instalează după expunerea la un macrolid. Tulpinile cu rezistenţă MLSb
inductibilă prezintă in vitro rezistenţă la membrii grupului de macrolide ce au inelul lactonic
central cu 14-atomi (eritromicina, claritromicina) şi 15-atomi (azitromicină), în timp ce rămân
sensibile la membrii macrolidelor cu 16 – atomi (josamicina, spiramicina, rokitamicina), la
lincosamide şi la steptograminele de tip B [48].
I.4. Patogeneza infecţiilor determinate de Pseudomonas aeruginosa
Ps. aeruginosa este patogenul oportunist Gram-negativ cel mai frecvent identificat în
infecţiile nosocomiale, deoarece ~ 50% din pacienţii spitalizaţi prezintă un risc crescut de
colonizare cu acest agent. Această bacterie infectează în primul rând indivizii imunocompromişi
(pacienţii cu cancer, SIDA sau transplant de maduvă osoasă), sau cei la care barierele normale
sunt lezate datorită arsurilor, dispozitivelor medicale (catetere), sau utilizării prelungite a
antibioticelor cu spectru larg. Astfel, Ps. aeruginosa determină apariţia unor infecţii
nosocomiale severe, infecţii care pun în pericol viaţa pacienţilor imunocompromişi, precum şi
infecţii cronice la pacienţii cu fibroză chistică. Pacienţii spitalizaţi ventilaţi din unităţile de
îngrijire intensivă frecvent manifestă o sensibilitate crescută la colonizarea cu Ps. aeruginosa în
tractul respirator superior (gât şi/sau trahee) [5]. Tranziţia de la colonizare la infecţia cu Ps.
aeruginosa este frecvent observată în cazurile de imunosupresie a mecanismelor de apărare
ale gazdei, cum sunt cele care apar la pacienţii cu cancer, aflaţi sub chemoterapie, când
nivelurile sangvine ale neutrofilelor PMN sunt sub 100/mm3. Capacitatea Ps. aeruginosa de a
determina un număr impresionant şi divers de infecţii acute şi cronice se datorează unui
arsenal de factori de virulenţă (asociaţi celulei bacteriene şi factori lor extracelulari) pe care
această bacterie îi posedă [49].
Sistemele de semnalizare celulară controlează expresia şi permit producerea
coordonată dependentă de densitatea celulară, a mai multor factori de virulenţă extracelulari
[49]. De asemenea, aceste sisteme sunt implicate şi în producerea factorilor care ajută Ps.
aeruginosa să depășească mecanismele de apărare ale gazdei.
I.5. Rezistenţa la antibiotice a tulpinilor de Ps. aeruginosa
Tulpinile de Ps. aeruginosa manifestă rezistenţă naturală la numeroase antibiotice
active faţă de bacilii Gram-negativi: aminopeniciline, cefalosporine de generaţia I (cefalotin,
cefazolin) şi generaţia II (cefamandol, cefuroxim), precum şi la unele cefalosporine de
10
generaţia III (cefotaxim şi moxalactam) [67]. Fenotipul sensibil de Ps. aeruginosa (aşa-numitul
tip sălbatic) prezintă sensibilitate la antibioticele -lactamice anti-pseudomonadale
[carboxipeniciline (carbenicilina, ticarcilina), ureidopeniciline (azlocilina, piperacilina), la unele
cefalosporine de generaţie III (cefsulodin, cefoperazonă şi ceftazidim), la toate cefalosporinele
de generaţie patru, la monobactami (aztreonam) şi la carbapenemi (imipenem şi meropenem)]
[68]. Rezistenţa intrinsecă a celulelor de Ps. aeruginosa la agenţii antimicrobieni este mult mai
accentuată când microorganismul creşte într-un biofilm. Anumite tulpini sălbatice de Ps.
aeruginosa pot dobândi rezistenţă în cursul tratamentului cu antibiotice -lactamice. Astfel,
tulpinile de Ps. aeruginosa pot prezenta rezistenţă dobândită la -lactami prin unul din
următoarele mecanisme: (1) inactivarea enzimatică a antibioticului datorită sintezei de -
lactamaze, (2) permeabilitate redusă a membranei externe şi/sau (3) expresia crescută a
transportorilor de eflux. [68]. De asemenea, au apărut tulpini de Ps. aeruginosa la care pot
exista simultan sau în diferite combinaţii toate aceste mecanisme de rezistenţă la -lactami.
II. Mecanismele de quorum-sensing and response (QS) la S. aureus şi Ps. aeruginosa
Organizarea multicelulară şi comportamentul social la bacterii este rezultatul unor
procese complexe de comunicare şi semnalizare intra - şi intercelulară, reglate prin quorum-
sensing and response (QS), sistem de reglare ubiquitar în lumea bacteriană [71].
Comunicarea între bacterii se realizează prin intermediul unor molecule semnal cu
greutate moleculară mică, denumite feromoni sau autoinductori (AI), pe care bacteriile le
secretă [72]. Bacteriile în mod specific eliberează, detectează şi răspund la acumularea acestor
molecule în mediul extracelular. QS reprezintă mecanismul ce le permite bacteriilor să simtă
densitatea populaţiei bacteriene înconjurătoare cu ajutorul moleculelor semnal şi să răspundă
în mod coordonat la această informaţie prin reglarea expresiei diferitelor gene [72, 73, 74].
II.1. Moleculele implicate în mecanismul de QS
Mediatorii QS sunt reprezentaţi de feromonii bacterieni, ce au fost definiţi de Karlson şi
Luscher in 1959 ca substanţe secretate de către un individ în mediul înconjurător, unde vor fi
recepţionate de un al doilea individ aparţinand aceleiasi specii şi având drept consecinţă o
acţiune specifică (de exemplu, un anumit comportament sau declanşarea unui proces evolutiv).
Moleculele de semnalizare QS aparţin unor familii distincte de compuşi chimici: (i) acil-
homoserin-lactone (AHL) la bacteriile Gram-negative, (ii) oligopeptide AIP (autoinducing
11
peptides) la bacteriile Gram-pozitive, (iii) AI2, o molecula de semnalizare implicată în
comunicarea între speciile bacteriene, fiind prezentă atât la bacteriile Gram-negative cât şi la
cele Gram-pozitive şi (iv) butanolide, compuşi difuzibili similari autoinductorilor, sintetizaţi de
unele specii de Streptomyces, care intervin în reglarea producţiei de antibiotice şi de metaboliţi
generaţi în faza staţionară de creştere [75].
II.3.1. Mecanismele QS la Pseudomonas aeruginosa
Iniţial, la Ps. aeruginosa au fost identificate 2 sisteme de semnalizare intercelulară:
lasR-lasI si rhlR-rhlL. Ulterior, a fost identificată o moleculă nouă de QS, 2-heptil-3-hidroxil-4-
quinolona, denumită PQS, care constituie o legătură reglatorie suplimentară între circuitele de
quorum-sensing Las şi Rhl [83].
II.3.1.1. Sistemul quorum-sensing las
Sistemul quorum-sensing las reprezintă primul sistem de semnalizare intercelulară
descris la această specie bacteriană, fiind alcătuit din 2 gene: lasI şi lasR. Produsul genei
lasI, autoinductor-sintetaza LasI, direcţionează sinteza moleculei semnal 3-oxo-C12-HSL (N-
[3-oxododecanoil]-L-homoserinlactona [86]. Gena lasR codifică sinteza proteinei reglator LasR
cu rol de activator transcripţional. LasR recunoaşte molecula semnal, se leagă la aceasta
formând complexul LasR-3-oxo-C12-HSL, ce reglează expresia unor gene de virulenţă (lasB,
lasA, aprA şi toxA), precum şi a genei lasI, astfel se constituie o buclă feedback de autoinducţie
[85, 88, 89].
II.3.1.2. Sistemul quorum-sensing rhl
Al doilea sistem de semnalizare descoperit la Ps. aeruginosa este rhl, are o organizare
structurală similară cu cea a sistemului las, fiind alcătuit din activatorul transcripţional RhlR şi
din autoinductor-sintetaza RhlI, responsabilă de sinteza moleculei semnal N-butiril-L-
homoserinlactona (C4-HSL) [86]. Complexul activator-autoinductor RhlR-C4-HSL indeplineşte
câteva funcţii importante: (i) reglează expresia operonului rhlAB, ce codifică
ramnosiltransferaza, responsabilă de sinteza ramnolipidului, (ii) activează expresia genei rpoS,
ce codifică sinteza factorului sigma de fază staţionară RpoS, responsabil de controlul expresiei
a numeroase gene, (iii) reglează producerea de metaboliţi secundari: piocianina şi cianide şi
(iv) reglează expresia coordonată a unor factori de virulenţă: elastaza LasB şi proteaza alcalină
[88].
12
Sistemul las controlează la nivel transcripţional şi posttranscripţional activatorul
transcripţional RhlR al sistemului rhl, reglează pozitiv expresia proteinelor RhlR şi RhlI, iar
complexul LasR/3-oxo-C12-HSL activează transcripţia genei rhlR [90]. De asemenea, sistemul
las exercită un control suplimentar asupra sistemului rhl, deoarece 3-oxo-C12-HSL poate
acţiona posttranslaţional blocând activarea RhlR de către C4-HSL, datorită capacităţii sale de a
competiţiona cu C4-HSL pentru legarea la RhlR [90].
II.4.1. Mecanismul QS la S. aureus – reglatorul agr
Sistemul agr (accessory gene regulator) este primul reglator global al expresiei genelor
de virulenţă detectat la stafilococci şi codifică elaborarea mecanismului de QS dependent
de densitatea bacteriană. S. aureus utilizează o AIP modificată postranslaţional, ce conţine
un inel tiolactonic spre a regla producerea factorilor de virulenţă ca raspuns la creşteri ale
densităţii populaţiei bacteriene. Locusul agr are 3-kb şi este alcătuit din regiuni înalt conservate
şi din regiuni hipervariabile în rândul tulpinilor de S. aureus. Secvenţa regiunii hipervariabile
este ţinta amplificării PCR pentru definirea tipurilor agr. Variaţia de secvenţă în genele agrB,
agrD şi agrC a condus la identificarea a cel puţin 4 grupe de specificitate agr la S. aureus, în
care octapeptidele produse de un grup inhibă expresia agr din alte grupe prin inhibiţie
competitivă [110]. Fiecare grup are caracteristică o secvenţă de aminoacizi specifică
feromonului, în care numai structura tiolactonică (sau structura lactonei) este conservată [110].
Expresia reglatorului agr contribuie la patogeneza infecţiilor stafilococcice în câteva
modele experimentale: abces subcutan murin, artrite septice şi endocardite la iepure. Astfel,
tulpinile mutante agr obţinute pe aceste modele de infecţie prezintă o virulenţă atenuată
comparativ cu tulpinile parentale corespunzatoare, ceea ce indică că expresia exoproteinelor
de fază post-exponenţială este esenţială pentru patogeneza bolii stafilococcice [109]. Expresia
agr este implicată în invazia şi apoptoza celulelor epiteliale [111].
II.4.2. Reglatorii expresiei factorilor de virulenţă la S. aureus
Expresia factorilor de virulenţă la S. aureus este controlată de trei tipuri de sisteme
reglatorii, reprezentate prin: (1) reglatorii globali: agr, sar, sae şi sigB, (2) sisteme de
transducţie a semnalului cu 2 componente, cu rol de reglatori ai expresiei genelor de virulenţă:
ArlRS, SrrAB şi (3) alţi reglatori transcripţionali: represorul toxinelor (Rot) şi factorul alternativ
sigma ( B) [117].
13
III. Modalităţi de atenuare a virulenţei şi patogenităţii bacteriene prin blocarea QS
Primul nivel la care se poate realiza inhibarea procesului de QS este cel al sintezei
autoinductorilor sau a diseminării acestora prin diminuarea concentraţiei lor extracelulare.
Astfel, inhibiţia poate fi realizată prin: (i) utilizarea unor enzime bacteriene, lactonaze, secretate
de diferite specii de Bacillus, care degradează autoinductorii, (ii) hidroliza alcalină a
autoinductorilor, nonenzimatică la pH ridicat şi (iii) utilizarea unor microorganisme provenite din
mediile naturale (ex. Variovorax paradoxus), care utilizează HSL ca unică sursă de C şi N,
conducând la diminuarea concentraţiei moleculelor de semnalizare în mediu [126].
Al doilea nivel la care poate fi blocată declanşarea mecanismului de QS este inhibarea
receptării semnalelor prin utilizarea unor molecule competitive (cu structură chimică
asemănătoare feromonilor bacterieni) sau necompetitive (cu structură chimică diferită) capabile
să interfere cu legarea HSL la proteina senzor sau cu transmiterea semnalului la proteina
reglatoare [126].
O altă strategie de blocare a QS bacterian este utilizarea unor inhibitori naturali
sintetizaţi de organismele superioare. Astfel s-a demonstrat că enonele şi furanonele
halogenate secretate de alga marină Delisea pulchra inhibă QS bacterian, prevenind
colonizarea suprafeţelor şi formarea biofilmelor bacteriene, ca şi procesul de biofuling
consecutiv formării acestora. De asemenea există studii care arată că o serie de plante produc
compuşi care inhibă QS bacterian (ex. Pisum sativum) [126].
III.3. Probiotice – potenţiali inhibitori ai QS
Probioticele sunt suplimente alimentare care conţin microorganisme (Mo) viabile, care
atunci când sunt administrate în cantităţi adecvate au un efect benefic asupra stării de sănătate
a gazdei (FAO/WHO, 2002) [131]. Mo probiotice sunt membri ai microbiotei intestinale
normale, sau sunt specii tranzitorii cu efecte benefice pentru organism la trecerea lor prin
tractul gastrointestinal. Mo benefice sunt adăugate sub forma de aditivi în anumite alimente
(iaurt, kefir sau alte produse lactate) sau în produse farmaceutice (capsule, tablete) [131].
O strategie mai puţin menţionată în literatura de specialitate, utilizată în atenuarea
patogenităţii şi virulenţei bacteriene la tulpini izolate din clinică aparţinând genurilor P.
aeruginosa şi S. aureus prin interferenţa cu QS bacterian, este reprezentată de utilizarea de
antagonişti ai QS bacterian, reprezentaţi de molecule solubile produse de tulpini de
Lactobacillus cu potenţial probiotic.
14
PARTEA EXPERIMENTALĂ Obiectivul general al acestui studiu a fost investigarea in vitro a influenţei unei tulpini de
probiotic asupra expresiei genelor ce codifică sistemele quorum-sensing and response (QS),
precum şi asupra unor procese bacteriene reglate prin QS la tulpini de Ps. aeruginosa şi de S.
aureus, izolate din surse clinice, multirezistente la antibiotice şi cu potenţial de formare a
biofilmelor.
Obiective specifice
1. Caracterizarea fenotipică a tulpinilor analizate prin identificarea biochimică, stabilirea
pattern-urilor de rezistenţă la antibiotice prin teste convenţionale şi complementare
(antibiograma difuzimetrică, CMI prin E-Test) şi detectarea unor factori de virulenţă solubili.
2. Caracterizarea genotipică a factorilor de virulenţă caracteristici tulpinilor de S. aureus şi Ps.
aeruginosa studiate.
3. Caracterizarea moleculară a sistemelor de quorum-sensing (QS) la tulpinile de S. aureus şi
Ps. aeruginosa: grupul agr şi reglatorii globali ai genelor de virulenţă (sar, rot, srrAB şi arlRS) şi
sistemele QS (las şi rhl) la Ps. aeruginosa.
4. Evidenţierea prin metode fenotipice a efectelor inhibitorii ale fracţiunii solubile de cultură de
probiotice asupra tulpinilor patogene de S. aureus şi Ps. aeruginosa.
5. Demonstrarea, prin metode genetice a efectelor inhibitorii ale probioticului asupra expresiei
QS la tulpinile de S. aureus şi Ps. aeruginosa prin real-time qRT-PCR.
V. Rezultate şi discuţii
V.1. Caracterizarea fenotipică şi genotipică a tulpinilor de S. aureus şi Ps. aeruginosa
Identificarea celor 60 de tulpini de S. aureus și Ps. aeruginosa selectate pentru studiul
de faţă s-a realizat cu ajutorul galeriilor API Staph și API NE 20, precum și a sistemului
automat Vitek 2. Tulpinile de S. aureus analizate în acest studiu au fost izolate din diferite
probe patologice de la pacienţi cu dispozitive cardiovasculare. Cele mai multe tulpini de S.
aureus au provenit din hemoculturi venoase (61%) (Fig. 42).
15
Sursele de izolare ale tulpinilor de S. aureus studiate
61%
7%3%3%
20%
3%3%
hemoculturi venoase secreţii plagă
secreţii pleurale secreţii nazale
exsudat faringian secreţie vaginală
boală ocluzivă inghinală
Figura 42. Distribuţia procentuală, în funcţie de sursa de izolare, a tulpinilor de S. aureus analizate.
Tulpinile de Ps. aeruginosa analizate în acest studiu au fost izolate de asemenea de la pacienţi
spitalizaţi cu diferite afecţiuni cardiovasculare, sursele de izolare fiind foarte variate (Fig. 43),
(tabel 28).
Sursele de izolare ale tulpinilor de Ps. aeruginosa analizate
26%
17%17%
10%
10%
7%7%3% 3%
secreţii bronşice secreţii plagă secreţii pleurale
secreţii nazale uroculturi spute
secreţii traheale exsudat faringian hematom
Figura 43. Distribuţia procentuală, în funcţie de sursa de izolare, a tulpinilor de Ps. aeruginosa studiate.
V.1.1.1. Rezistenţa la meticilină şi MLSb a tulpinilor de S. aureus
Metoda difuzimetrică Kirby-Bauer utilizată pentru testarea sensibilităţii la antibiotice a
tulpinilor de S. aureus analizate a permis stabilirea pattern-urilor de rezistenţă la antibiotice
specifice pentru S. aureus, de importanţă clinică şi epidemiologică. Astfel, din cele 30 tulpini de
S. aureus analizate, 24 prezintă fenotipul de rezistenţă MLSb (macrolide-lincosamide-
streptogramin B), dintre care 22 au fenotipul MLSb inductibil, iar 2 tulpini prezintă fenotipul
MLSb constitutiv. 17 tulpini din cele 24 MLSb sunt de asemenea rezistente la meticilină (MRSA
- Methicillin-resistant Staphylococcus aureus).
Toate tulpinile de S. aureus analizate au fost sensibile la trimethoprim-
sulfamethoxazole (SXT), care rămâne o opţiune de tratament pentru infecţiile cu tulpini de S.
aureus cu rezistenţă multiplă la antibiotice.
16
V.1.1.2. Rezistenţa la antibioticele β-lactamice a tulpinilor de Ps. aeruginosa
Analiza interpretativă a rezultatelor testelor difuzimetrice realizate pentru tulpinile de
Ps. aeruginosa studiate a permis stabilirea pattern-urilor de rezistenţă caracteristice. Astfel,
tulpinile de Ps. aeruginosa studiate prezintă câteva fenotipuri de rezistență la -lactami: (1)
cefalosporinază constitutivă (la 5 tulpini) (Fig. 47), (2) cefalosporinază inductibilă (la 6 tulpini)
(Fig. 48), (3) carbapenamaze sau alt mecanism de rezistenţă la carbapenemi (pierderea unei
porine sau expresie unei pompe de eflux) (la 6 tulpini) (Fig. 47), (4) metalo- -lactamaze (la 3
tulpini) (Fig. 49, 50), (5) ESBL (la 2 tulpini) (Fig. 51) şi (6) penicilinază sensibilă la inhibitorii de
beta-lactamaze (2 tulpini) (Fig. 52).
Figura 47. Fenotipuri de cefalosporinază constitutivă (stânga) şi respectiv cefalosporinază constitutivă plus carbapenemază (dreapta). Săgeata dublă roşie indică cefalosporinaza constitutivă, iar săgeata verde prezenţa unei posibile carbapenamaze.
Figura 48. Cefalosporinază inductibilă (o β-lactamază a cărei expresie este indusă de imipenem) este indicată prin săgeata roşie.
Figura 50. Fenotipurile de cefalosporinază inductibilă şi metalo- -lactamază identificată prin E-test MBL.
carbapenemaza
17
14 dintre tulpinile studiate prezintă sensibilitate la toate antibioticele folosite pentru stabilirea
pattern-urilor de rezistenţă, în timp ce patru dintre tulpinile studiate manifestă rezistenţă la toţi
-lactamii analizați (Fig. 52).
Figura 51. Fenotip ESBL (extended-spectrum-beta-lactamases).
Figura 49. Carbapenamază (stânga) şi confirmarea carbapenamazei prin E-test MBL (dreapta). Raportul
între CMI IP/IPI 8 indică prezenţa unei metalo- -lactamaze.
Figura 52. Penicilinază sensibilă la inhibitorii de beta-lactamaze (TIM – ticarcilină – acid clavulanic) indicată de săgeata verde (stânga). Fenotipul de rezistenţă la toţi agenţii beta-lactamici testaţi (dreapta).
V.1.2. Expresia fenotipică a factorilor de virulenţă solubili
Spectrul de factori de virulenţă caracteristic fiecărei tulpini de S. aureus, respectiv de
Ps. aeruginosa studiate, s-a determinat prin metode fenotipice şi genotipice. Metodele
carbapenemaza
ESBL
penicilinază
sensibilă la TIM
18
fenotipice au fost alese pentru detectarea unor factori de virulenţă solubili prin cultivarea
tulpinilor pe medii ce conţin substratul enzimatic corespunzător fiecărui factor de virulenţă.
Metodele genetice au fost utilizate pentru a caracteriza anumiţi factori de virulenţă pentru care
metodele PCR reprezintă o alternativă la metodele clasice, care nu sunt optimizate, sau nu îi
pot detecta în mod corepunzător. Abordarea mixtă, fenotipică şi genotipică utilizată este
complementară, lărgind spectrul de factori de virulenţă analizaţi.
Astfel, atât la tulpinile de S. aureus cât şi la cele de Ps. aeruginosa metodele fenotipice
au fost alese pentru a detecta: toxinele formatoare de pori (lecitinaza, lipaza, hemolizine), şi
exoenzimele (cazeinaza, amilaza şi DN-aza).
V.1.2.1. Spectrul de factori de virulenţă prezenţi la S. aureus
Din cele 30 tulpini de S. aureus analizate, majoritatea au prezentat toxine formatoare
de pori (lecitinază, lipază, hemolizină alfa şi beta) iar 4 tulpini sunt non-hemolitice, dar au
factorul CAMP (Fig. 57) (tabel 32).
Distribuţia procentuală a factorilor de virulenţă
solubili la tulpinile de S. aureus analizate
53,30%
40%46,66%
66,66%
100%
10%
0,00%
20,00%
40,00%
60,00%
80,00%
100,00%
lecitinază lipază cazeinază amilază factor
CAMP
DN-ază
Pro
ce
nt
%
Distribuţia procentuală a tipului de hemolizină
caracteristic tulpinilor de S. aureus studiate
13,33%
40%
46,66%
0,00%
20,00%
40,00%
60,00%
80,00%
100,00%
alfa-hemolizină beta-hemolizină gamma-hemolizină
Pro
ce
nt
%
Figura 57. Spectrul factorilor de virulenţă solubili prezenţi la tulpinile de S. aureus studiate.
V.1.2.2. Spectrul de factori de virulenţă prezenţi la Ps. aeruginosa
Analiza rezultatelor testelor fenotipice pentru prezenţa factorilor de virulenţă solubili la
tulpinile de Ps. aeruginosa a demonstrat abilitatea acestor tulpini de a produce un adevărat
cocktail de exoenzime şi toxine formatoare de pori (Fig. 58). Producerea factorilor de virulenţă
extracelulari: proteaze, hemolizine (fosfolipaze şi lecitinază), citotoxină, siderofori, pigementul
difuzibil piocianină şi exotoxinele A, S, T, U, Y, este responsabilă de invazia ţesuturilor de către
Ps. aeruginosa.
19
Distribuţia procentuală a factorilor de virulenţă
solubili la tulpinile de Ps. aeruginosa analizate
80%76,60%
50% 50%
63,30%
16,60%
0%
20%
40%
60%
80%
100%
lecitinază lipază cazeinază amilază hemolizină DN-ază
Pro
ce
nt
%
Figura 58. Spectrul factorilor de virulenţă solubili prezenţi la tulpinile de Ps. aeruginosa studiate.
V.1.3.1. Gene de virulenţă detectate prin PCR la tulpinile de S. aureus
Din analiza rezultatelor testelor PCR efectuate se poate remarca că abundenţa şi
redundanţa factorilor de virulenţă este responsabilă de diversitatea extraordinară a entităţilor
clinice infecţioase în care sunt implicate aceste microorganisme.
Tabel 34. Prevalenţa genelor ce codifică opt adezine tip MSCRAMM la tulpinile de S. aureus analizate.
Nr. crt.
Tulpina de S. aureus
Sursa de izolare Gene pentru 8 adezine tip MSCRAMM
bbp ebpS fib clfA clfB fnbA fnbB cna
1 10936 hemocultură - + + + + + - +
2 11372 hemocultură - + + + + + - +
3 11327 hemocultură - + + + + + - +
4 11325 hemocultură - + + + + + - + 5 11573 hemocultură - - + + + + - +
6 11047 hemocultură - - + + + + - +
7 5/06 hemocultură - - + + + + - +
8 9/06 hemocultură - + + + + + - +
9 11323 hemocultură - + + + + + - +
10 1391 secreţie vaginală - + + + + + - -
11 11916 hemocultură venoasă
- - + + - + - -
12 11501 hemocultură venoasă
- - + + - + - +
13 128 secreţie pleurală - - + + - + - -
14 424/07 exsudat nazal - + - + - + - -
15 75 hemocultură venoasă
- - + + - + - -
16 14654 hemocultură venoasă
- - - - - + - -
17 14652 hemocultură venoasă
- - - - - + - -
18 688 hemocultură venoasă
- + + + - + - -
19 14653 hemocultură venoasă
+ + + + - + - -
20 393 secreţie plagă - - + + - + - - 21 14596 hemocultură
venoasă - - + + - + - -
22 839 secreţie pleurală - - + + - + - -
23 890 boala oculziva inghinală
- + + + - + - -
20
24 994 secreţie plagă - + + + - + - +
25 2380 exsudat faringian - + + + - + - +
26 1022 secreţie plagă - + + + - + - +
27 14946 hemocultură venoasă
- + - + - + - +
28 900 secreţie plagă - + + + - + - +
29 1004 plagă mediastinala
- + + + - + - -
30 911 secreţie plagă - + + + - + - -
Tabel 35. Prevalenţa genelor ce codifică pentru coagulază, proteina A şi câteva exoproteine la tulpinile de S. aureus studiate.
Nr. crt.
Tulpina de S. aureus
Gena coag
Gena spa
Gena hlg
Gena lukPV
Gena tst
Gene pentru enterotoxine
sea seb sec sed see
1 10936 + + + - - - - + - -
2 11372 + + + - - - - + - -
3 11327 + + + - - - - + - -
4 11325 + + + - - - - + - -
5 11573 + + + - - - + - - +
6 11047 + + + - - - - - - +
7 5/06 + + + - - - + - - +
8 9/06 + + + - - - - + - -
9 11323 + + + - - - - + - +
10 1391 + + + - - - - - - -
11 11916 + + + - - + - - - -
12 11501 + + + - - + + - - +
13 128 + + + - - - - + - -
14 424/07 + + + - - + + - + +
15 75 + + + - - - - - - -
16 14654 + + + - - - - - - -
17 14652 + + + + - - - - - -
18 688 + + + - - - - - - -
19 14653 + + + + - - - - - -
20 393 + + + - - + - - - -
21 14596 + + + - - - - - - -
22 839 + + + - - - - - - -
23 890 + + + - - - - - - -
24 994 + + + - - - - - - -
25 2380 + + + - - - - - - -
26 1022 + + + - - - - - - -
27 14946 + + + - + + - - -
28 900 + + + - - - - - - -
29 1004 + + + - - - - - - -
30 911 + + + - - + - - - +
V.1.3.2. Gene de virulenţă detectate prin PCR la tulpinile de Ps. aeruginosa
Analiza rezultatelor PCR pentru detectarea prezenţei genelor ce codifică 12
dintre cei mai importanţi factori de virulenţă implicaţi în patogeneza infecţiilor cu Ps.
aeruginosa, a arătat că toate tulpinile de Ps. aeruginosa analizate posedă genele ce
codifică sinteza a 8 factori de virulenţă (tabel nr. 36) .
21
Tabel 36. Prevalenţa genelor ce codifică pentru 12 factori de virulenţă la tulpinile de Ps. aeruginosa studiate.
Nr. crt.
Tulpina de Ps. aeruginosa
Sursa de izolare Gene pentru proteaze Gene pentru proteine solubile Gene pentru toxine Gena
algD Gena pvdA lasB aprA tcr rhlAB plcH plcN exoA exoS exoT exoU
1 101 secreţie bronşică + + + + + + + + + + + +
2 1558 secreţie bronşică + + + + + + + + + + + +
3 111 secreţie plagă + + + + - + + - + + + +
4 1443 secreţie plagă + + + + + + + - + + + +
5 1093 - + + + + + + + - + + + +
6 1561 secreţie plagă + + + + + + + + + + - +
7 20 spută + + + + - + + + + + - -
8 1442 secreţie bronşică + + + + + + + + + + - +
9 84 secreţie bronşică + + + + + + + - + + - +
10 1562 secreţie plagă + + + + + + + + + + - +
11 891/07 secreţie pleurală + + + + + + + + + + + +
12 1150/07 secreţie bronşică + + + + + + + + + + + +
13 2527 esxudat nazal + + + + + + + + + + + +
14 1366/07 urocultură + + + + + + + + + + + +
15 2584 urocultură + + + + + + + + + + + +
16 1563 secreţie pleurală + + + + - + + + + + - +
17 768 secreţie pleurală + + + + + + + + + + + -
18 1642 secreţie bronşică + + + + + + + + + + + +
19 1491 secreţie bronşică + + + + + + + + + + + -
20 008 Cap + + + + + + + + + + + +
21 196 - + + + + + + + + + + + +
22 3211 esxudat faringian + + + + + + + + + + + +
23 794 secreţie plagă + + + + + + + + + + + +
24 796 secreţie traheală + + + + + + + + + + + +
25 848 secreţie pleurală + + + + + + + + + + + -
26 811 hematom + + + + + + + + + + + +
27 823 secreţie pleurală + + + + + + + - + + + +
28 810 secreţie bronşică + + + + + + + + + + + -
29 865 secreţie traheală + + + + + + + + + + + +
30 1612 urocultură + + + + + + + + + + + -
V.2. Caracterizarea sistemelor de QS la tulpinile de S. aureus şi Ps. aeruginosa
V.2.1. Caracterizarea moleculară a sistemului QS agr și a reglatorilor genelor de virulență la tulpinile de S. aureus Rezultatele detectării prin PCR a grupelor agr şi a genelor ce codifică patru dintre reglatorii
factorilor de virulenţă la tulpinile de S. aureus analizate sunt listate în tabelul nr. 37.
Tabel. 37. Prevalenţa genelor ce codifică sistemul QS agr și a genelor ce codifică patru reglatori globali ai genelor de virulență la tulpinile de S. aureus analizate.
Nr. crt. Tulpina de S. aureus Sursa de izolare Locus agr Gene care codifică reglatorii genici ai
factorilor de virulență
sarS rot srrAB arlRS
1 10936 hemocultură III + + + +
2 11372 hemocultură III + + + +
3 11327 hemocultură III + + + +
4 MRSA 11325 hemocultură III + + + +
5 MRSA 11573 hemocultură I + + + +
6 MRSA 11047 hemocultură I + + + +
7 5/06 hemocultură I + + + +
8 9/06 hemocultură III + + + +
9 11323 hemocultură III + + + +
10 MRSA 1391 secreţie vaginală III + + + +
11 11916 hemocultură venoasă I + + + +
12 MRSA 11501 hemocultură venoasă I + + + +
13 128 secreţie pleurală I + + + +
14 MRSA 424/07 exsudat nazal I + + + +
15 MRSA 75 hemocultură venoasă I + + + +
16 14654 hemocultură venoasă I + + + +
17 14652 hemocultură venoasă I + + + +
18 MRSA 688 hemocultură venoasă III + + + +
19 14653 hemocultură venoasă IV + + + +
20 383 sau 393 MRSA secreţie plagă I + + + +
21 14596 hemocultură venoasă III + + + +
22 839 secreţie pleurală III + + + +
23 890 MLSb boala oculzivă inghinală III + + + +
24 MLSb 994 secreţie plagă III + + + +
25 2380 MRSA exsudat faringian III + + + +
26 1022 MRSA, MLSb secreţie plagă III + + + +
27 14946 hemocultură venoasă III + + + +
28 900 MRSA secreţie plagă III + + + +
29 1004 MLSb plagă mediastinala III + + + +
30 911 MLSb secreţie plagă II + + + +
Analiza rezultatelor PCR privind prezenţa genei agr şi a genelor ce codifică 4 reglatori
globali (sar, srrAB, arlRS şi rot) la tulpinile de S. aureus analizate, a arătat că toate tulpinile posedă
atât sistemul QS agr, cât şi cei 4 reglatori ai genelor de virulență, ceea ce demonstrează rolul
acestor sisteme în coordonarea expresiei factorilor de virulență la tulpinile studiate.
23
V.2.2. Caracterizarea moleculară a sistemelor QS las și rhl tulpinile de Ps. aeruginosa
Analiza rezultatelor PCR privind prezenţa genelor ce codifică cele două sisteme QS las şi
rhl la tulpinile de Ps. aeruginosa studiate, a arătat ca toate tulpinile de Ps. aeruginosa studiate
prezintă genele lasI, lasR, rhlI şi rhlR. Circuitele de quorum-sensing la Ps. aeruginosa controlează
expresia unui număr mare de factori de virulenţă extracelulari: exoenzime (elastaze, proteaza
alcalină), metaboliţi secundari (piocianina, cianide-hidrogen, pioverdina) şi toxine (exotoxina A),
precum şi dezvoltarea de biofilme [90]. Prin urmare, cele două sisteme de de semnalizare celulară
las și rhl sunt implicate în controlul expresiei şi în producerea coordonată dependentă de
densitatea celulară a mai multor factori de virulenţă extracelulari, care determină leziuni tisulare
extinse, invadează sistemul circulator, şi consecutiv promovează diseminarea sistemică,
conducând la apriția atât a infecţiilor pulmonare acute cât şi cronice [89].
V.3. Selectarea şi caracterizarea tulpinii de probiotic cu rol inhibitor al expresiei fenotipice a factorilor de virulenţă la tulpinile patogene studiate
Din tulpinile de probiotice Y, FA și FO I s-au obținut supernatantele sterile, prin filtarea
celor trei culturi de Lactobacillus paracasei subsp. paracasei, care au fost utilizate în toate
experimentele pentru stabilirea influenței pe care o exercită asupra creșterii și expresiei factorilor
de virulență solubili la tulpinile de S. aureus și Ps. aeruginosa studiate.
V.4.1. Influenţa probioticului asupra curbei de creştere a tulpinilor de S. aureus şi Ps. aeruginosa
Analiza rezultatelor privind influența exercitată de fiecare tip de supernantant de probiotic
asupra creșterii tulpinilor patogene de S. aureus şi Ps. aeruginosa studiate, a arătat scăderea ratei
de multiplicare a culturilor bacteriene în prezenţa fiecărui tip de supernantant testat comparativ cu
tulpinile control (netratate cu probiotice).
V.4.2. Influenţa probioticului asupra expresiei unor factori solubili de virulenţă şi a aderenţei la substrat inert a tulpinilor de S. aureus şi Ps. aeruginosa
Astfel, la S. aureus s-a observat o modificare a creşterii tulpinilor tratate cu probiotic față
de cele netratate în sensul scăderii capacității de a fermenta manitolul, precum și o ușoară scădere
a exprimării hemolizinelor pe mediul cu geloză-sânge.
24
În ceea ce priveşte capacitatea de aderenţă la substrat, rezultatele testului slime au arătat
o scădere a valorilor DO la 490 nm a suspensilor bacteriene crescute în prezenţa supernatantelor
de probiotice comparativ cu cele ale suspensiilor control (crescute în condiţii normale) (Fig. 129,
130), care semnifică o scădere a capacităţii de aderenţă la substrat inert a tulpinilor patogene
crescute în prezenţa supernatantelor de probiotice comparativ cu tulpinile control.
În urma analizei rezultatelor obținute pentru fiecare supernatant testat cu tulpinile
patogene, tulpina Y de probiotic a fost selectată pentru a fi utilizată în experimentele ulterioare,
deoarece a manifestat efectul inhibitor cel mai evident și constant asupra creșterii coloniilor de Ps.
aeruginosa pe mediul selectiv Cetrimid, respectiv asupra capacității de fermentare a manitolului de
către tulpinile de S. aureus analizate. De asemenea, din analiza rezultatelor testului slime obţinute
pentru fiecare tulpină de probiotic, s-a observat că tulpina Y a avut efectul inhibitor cel mai evident
asupra aderenţei la substrat inert a tulpinilor de S. aureus și Ps. aeruginosa studiate.
Aderenţa la substrat inert a tulpinilor de S. aureus cultivate în prezenţa
supernatantului Y de probiotic (probe) comparativ cu tulpinile normale
(control)
0,001
0,031
0,061
0,091
0,121
0,151
0,181
0,211
0,241
0,271
0,301
0,331
tip de tulpină
DO
490n
m
control 1 proba 1 control 2 proba 2 control 3 proba 3control 4 proba 4 control 5 proba 5 control 6 proba 6control 7 proba 7 control 8 proba 8 control 9 proba 9control 10 proba 10 control 11 proba 11 control 12 proba 12control 13 proba 13 control 14 proba 14 control 15 proba 15control 16 proba 16 control 17 proba 17 control 18 proba 18control 19 proba 19 control 20 proba 20 control 21 proba 21control 22 proba 22 control 23 proba 23 control 24 proba 24control 25 proba 25 control 26 proba 26 control 27 proba 27control 28 proba 28 control 29 proba 29 control 30 proba 30control ATCC proba ATCC
Figura 129. Influenţa supernantantului tulpinii Y de probiotic asupra capacităţii de aderenţă la substrat inert a tulpinilor de S. aureus studiate.
25
Aderenţa la substrat inert (testul slime) a tulpinilor de Ps. aeruginosa cultivate în
prezenţa supernatantului Y de probiotic (probe) comparativ cu tulpinile normale (control)
0,001
0,031
0,061
0,091
0,121
0,151
0,181
0,211
0,241
0,271
0,301
0,331
tip de tulpină
DO
49
0n
m
control 1 proba 1 control 2 proba 2 control 3 proba 3control 4 proba 4 control 5 proba 5 control 6 proba 6control 7 proba 7 control 8 proba 8 control 9 proba 9control 10 proba 10 control 11 proba 11 control 12 proba 12control 13 proba 13 control 14 proba 14 control 15 proba 15control 16 proba 16 control 17 proba 17 control 18 proba 18control 19 proba 19 control 20 proba 20 control 21 proba 21control 22 proba 22 control 23 proba 23 control 24 proba 24control 25 proba 25 control 26 proba 26 control 27 proba 27control 28 proba 28 control 29 proba 29 control 30 proba 30control ATCC proba ATCC
Figura 131. Influența supernantantului tulpinii Y de probiotic asupra capacității de aderenţă la substrat inert a tulpinilor de Ps. aeruginosa studiate.
V.5. Stabilirea prin metode genetice a efectelor inhibitorii ale probioticului asupra expresiei QS la tulpinile de S. aureus şi Ps. aeruginosa
Sistemele de QS sunt implicate în reglarea expresiei coordonate a factorilor de virulenţă la
tulpinile de S. aureus și Ps. aeruginosa. Influența exercitată de supernatantul obținut prin filtrarea
culturii de tulpină Y de probiotic asupra expresiei genelor de QS la tulpinile patogene studiate a
fost studiată prin real-time-PCR. Expresia genelor de QS la tulpinile patogene crescute în prezența
supernatantului de probiotic Y a fost comparată cu cea a genelor QS de la tulpinile patogene
crescute în condiții normale.
V.5.1. Cuantificarea relativă prin real-time qRT-PCR a expresiei genei agr la tulpinile de S. aureus cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic comparativ cu tulpinile normale
Cuantificarea relativă a expresiei genei agr la cele 30 tulpini de S. aureus crescute în
prezenţa probioticului (considerate probe) s-a realizat prin comparaţie cu valorile de expresie
genică obţinute de aceleaşi tulpini crescute în condiţii normale (considerate controale). De
asemenea, gena de referinţă pentru ARNr 16S a fost folosită pentru a normaliza expresia genelor
agr la tulpinile studiate.
26
Cuantificarea relativă a expresiei genei agr III la tulpinile de S. aureus
cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic (probe) comparativ
cu tulpinile crescute în condiţii normale (control)
-1,3
-1,2-1,1
-1
-0,9
-0,8-0,7
-0,6
-0,5
-0,4-0,3
-0,2
-0,1
00,1
0,2
0,3
0,40,5
0,6
0,7
0,80,9
1
tip de tulpină
log10
control 1 proba 1 control 2 proba 2 control 3 proba 3
control 4 proba 4 control 8 proba 8 control 9 proba 9
control 10 proba 10 control 18 proba 18 control 21 proba 21
control 22 proba 22 control 23 proba 23 control 24 proba 24
control 25 proba 25 control 26 proba 26 control 27 proba 27
control 28 proba 28 control 29 proba 29 control ATCC proba ATCC Figura 134. Valorile expresiei genei agr III obținute prin cuantificarea relativă prin real-time PCR la tulpinile de S. aureus crescute în prezenţa supernatantului de probiotic comparativ cu tulpinile control.
Cuantificarea relativă a expresiei genei agr I la tulpinile de
S. aureus cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic (probe)
comparativ cu tulpinile crescute în condiţii normale (control)
-1
-0,9
-0,8
-0,7
-0,6
-0,5
-0,4
-0,3
-0,2
-0,1
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
0,9
1
tip de tulpină
log
10
control 5 proba 5 control 6 proba 6 control 7 proba 7control 11 proba 11 control 12 proba 12 control 13 proba 13control 14 proba 14 control 15 proba 15 control 16 proba 16control 17 proba 17 control 20 proba 20
Figura 135. Valorile expresiei genei agr III obţinute prin cuantificarea relativă prin real-time PCR la tulpinile de S. aureus crescute în prezenţa supernatantului de probiotic comparativ cu tulpinile control.
27
Cuantificarea relativă a expresiei genelor agr II şi agr IV la
tulpinile de S. aureus cultivate în prezenţa supernatantului
de probiotic (probe) comparativ cu tulpinile crescute în
condiţii normale (control)
-0,7
-0,6
-0,5
-0,4
-0,3
-0,2
-0,1
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
1
tip de tulpină
log
10
control 19
proba 19
control 30
proba 30
Figura 136. Valorile expresiei genei agr II şi respectiv agr IV, obţinute prin cuantificarea relativă prin real-time PCR la tulpinile de S. aureus tratate cu probiotic comparativ cu tulpinile control.
Analiza rezultatelor de cuantificare relativă a expresiei genei agr la tulpinile de S. aureus
cultivate în prezenţa supernatantului de cultură de probiotic Y comparativ cu tulpinile control, a
arătat că toate tulpinile crescute în prezenţa supernatantului de probiotic au exprimat gena agr, dar
probioticul a determinat o scădere a nivelului de expresie genică la tulpinile tratate cu probiotic
comparativ cu cel al tulpinilor control. Astfel, nivelul de expresie al genei agr III la tulpinile crescute
în prezenţa supernatanatului de probiotic a scăzut în medie cu 34% faţă de nivelul de expresie de
la tulpinile control. Nivelul de expresie al genei agr I la tulpinile cultivate în prezenţa supernatantului
de probiotic a scăzut în medie cu 42% faţă de nivelul de expresie de la tulpinile control; în cazul
tulpinii cultivată cu supernatantul de probiotic, ce exprimă agr II, nivelul de expresie a scăzut cu
43,7% faţă de nivelul expresiei de la tulpina control. Expresia genei agr IV la tulpina cultivată în
prezenţa supernatantului de probiotic a scăzut cu 46,7% faţă de nivelul de expresie de la tulpina
control.
V.5.2 Cuantificarea relativă prin real-time qRT-PCR a expresiei genelor QS la tulpinile de Ps. aeruginosa cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic comparativ cu tulpinile normale
Cuantificarea relativă a expresiei fiecărei gene QS prin real-time PCR la tulpinile de Ps.
aeruginosa cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic comparativ cu tulpinile control s-a
realizat după formula lui Pfaffl. Valorile raportului de expresie relativă normalizată a fiecărei gene
(lasI, lasR, rhlI şi rhlR) sunt prezentate în graficele din figurile nr. 139 – 142.
28
Cuantificarea relativă a expresiei genei lasI la tulpinile de
Ps. aeruginosa cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic (probe)
comparativ cu tulpinile cultivate în condiţii normale (control)
-2,5-2,4-2,3-2,2-2,1
-2-1,9-1,8-1,7-1,6-1,5-1,4-1,3-1,2-1,1
-1-0,9-0,8-0,7-0,6-0,5-0,4-0,3-0,2-0,1
00,10,20,30,40,5
tip de tulpină
log
10
control 1 proba 1 control 2 proba 2 control 3 proba 3 control 4
proba 4 control 5 proba 5 control 6 proba 6 control 7 proba 7
control 8 proba 8 control 9 proba 9 control 10 proba 10 control 11
proba 11 control 12 proba 12 control 13 proba 13 control 14 proba 14
control 15 proba 15 control 16 proba 16 control 17 proba 17 control 18
proba 18 control 19 proba 19 control 20 proba 20 control 21 proba 21
control 22 proba 22 control 23 proba 23 control 24 proba 24 control 25
proba 25 control 27 proba 27 control 28 proba 28 control 29 proba 29
control 30 proba 30 control ATCC proba ATCC
Figura 139. Valorile expresiei genei lasI obţinute prin cuantificarea relativă prin real-time PCR la tulpinile de Ps. aeruginosa cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic comparativ cu tulpinile control.
Cuantificarea relativă a expresiei genei lasR la tulpinile de
Ps. aeruginosa cultivate în prezenţa supernatantului probiotic (probe)
comparativ cu tulpinile cultivate în condţii normale (control)
-2
-1,9
-1,8
-1,7
-1,6
-1,5
-1,4
-1,3
-1,2
-1,1
-1
-0,9
-0,8
-0,7
-0,6
-0,5
-0,4
-0,3
-0,2
-0,1
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
tip de tulpină
log10
control 1 proba 1 control 2 proba 2 control 3 proba 3
control 4 proba 4 control 5 proba 5 control 6 proba 6
control 7 proba 7 control 8 proba 8 control 9 proba 9
control 10 proba 10 control 11 proba 11 control 12 proba 12
control 13 proba 13 control 14 proba 14 control 15 proba 15
control 16 proba 16 control 17 proba 17 control 18 proba 18
control 19 proba 19 control 20 proba 20 control 21 proba 21
control 22 proba 22 control 23 proba 23 control 24 proba 24
control 25 proba 25 control 26 proba 26 control 27 proba 27
control 28 proba 28 control 29 proba 29 control 30 proba 30
control ATCC proba ATCC Figura 140. Valorile expresiei genei lasR obţinute prin cuantificarea relativă prin real-time PCR la tulpinile de Ps. aeruginosa tratate cultivate în prezenţa supernatantului de comparativ cu tulpinile control.
29
Cuantificarea relativă a expresiei genei rhlI la tulpinile de
Ps. aeruginosa cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic (probe)
comparativ cu tulpinile cultivate în condiţii normale (control)
-2,5-2,4
-2,3-2,2
-2,1-2
-1,9-1,8-1,7
-1,6-1,5
-1,4-1,3
-1,2-1,1
-1
-0,9-0,8
-0,7-0,6
-0,5-0,4
-0,3-0,2-0,1
00,1
0,20,3
0,40,5
tip de tulpină
log10
control 1 proba 1 control 2 proba 2 control 3 proba 3 control 4
proba 4 control 5 proba 5 control 6 proba 6 control 7 proba 7
control 8 proba 8 control 9 proba 9 control 10 proba 10 control 11
proba 11 control 12 proba 12 control 13 proba 13 control 14 proba 14
control 15 proba 15 control 16 proba 16 control 17 proba 17 control 18
proba 18 control 19 proba 19 control 20 proba 20 control 21 proba 21
control 22 proba 22 control 23 proba 23 control 24 proba 24 control 25
proba 25 control 26 proba 26 control 27 proba 27 control 28 proba 28
control 29 proba 29 control 30 proba 30 control ATCC proba ATCC Figura 141. Valorile expresiei genei rhlI obţinute prin cuantificarea relativă prin real-time PCR la tulpinile de Ps. aeruginosa cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic comparativ cu tulpinile control.
Cuantificarea relativă a expresiei genei rhlR la tulpinile de
Ps. aeruginosa cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic (probe)
comparativ cu tulpinile cultivate în condiţii normale (control)
-2
-1,9
-1,8
-1,7
-1,6
-1,5
-1,4
-1,3
-1,2
-1,1
-1
-0,9
-0,8
-0,7
-0,6
-0,5
-0,4
-0,3
-0,2
-0,1
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
tip de tulpină
log
10
control 1 proba 1 control 2 proba 2 control 3 proba 3 control 4
proba 4 control 5 proba 5 control 6 proba 6 control 7 proba 7
control 8 proba 8 control 9 proba 9 control 10 proba 10 control 11
proba 11 control 12 proba 12 control 13 proba 13 control 14 proba 14
control 15 proba 15 control 16 proba 16 control 17 proba 17 control 18
proba 18 control 19 proba 19 control 20 proba 20 control 21 proba 21
control 22 proba 22 control 23 proba 23 control 24 proba 24 control 25
proba 25 control 26 proba 26 control 27 proba 27 control 28 proba 28
control 29 proba 29 control 30 proba 30 control ATCC proba ATCC
t
Figura 142. Valorile expresiei genei rhlR obţinute prin cuantificarea relativă prin real-time PCR la tulpinile de Ps. aeruginosa cultivate în prezenţa supernatantului de probiotic comparativ cu tulpinile control.
30
Nivelul de expresie al fiecărei gene QS la tulpinile cultivate în prezenţa supernatantului
steril de probiotic s-a modificat comparativ cu cel de la tulpinile control. Astfel, nivelul de expresie
al genei lasI la tulpinile cultivate în prezenţa filtratului de probiotic a scăzut în medie cu 35,6% faţă
de cel de la tulpinile control, expresia genei lasR a scăzut în medie cu 41,6%, a genei rhlI a scăzut
în medie cu 35,6%, iar a genei rhlR a scăzut în medie cu 41,5% faţă de nivelul de expresie de la
tulpinile control.
VI. Concluzii
1. Majoritatea tulpinilor de S. aureus izolate de la pacienţi cu infecţii asociate dispozitivelor
protetice cardiovasculare prezintă simultan fenotipurile MRSA şi MLSb, iar 50% dintre tulpinile de
Ps. aeruginosa studiate prezintă fenotipuri de multirezistenţă la majoritatea antibioticelor, ceea ce
conduce la scăderea drastică a opţiunilor de tratament şi la un prognostic grav, în cazul pacienţilor
cu imunitate scăzută sau cu boli cronice şi la necesitatea dezvoltării de noi alternative de tratament
la utilizarea antibioticelor.
2. Analizele fenotipice şi genetice au evidenţiat abundenţa şi redundanţa factorilor de
virulenţă la tulpinile de S. aureus şi Ps. aerguinosa analizate, ceea ce explică diversitatea
extraordinară a entităţilor clinice infecţioase în care sunt implicate aceste microorganisme.
3. Tulpinile de S. aureus studiate au prezentat gene pentru majoritatea factorilor de virulenţă
caracteristici acestei specii bacteriene; factorii de virulenţă detectaţi fiind responsabili de infecţiile
asociate cu dispozitivele cardiovasculare determinate de tulpinile de S. aureus analizate.
4. Majoritatea tulpinilor de Ps. aerguinosa analizate, indiferent de sursa de izolare sau de
pattern-ul de antioborezistență, au prezentat genele pentru toți factorii de virulenţă consacraţi la
Ps. aeruginosa, aspect care demonstrează clar faptul că aceşti factori sunt implicaţi şi în alte
procese, fiziologice, nu numai în inițierea şi dezvoltarea procesului infecţios, aceste tulpini fiind
ubicuitare.
5. Rezultatele testelor fenotipice au arătat că în supernatantul culturilor de Lactobacillus
paracasei subsp. paracasei cu proprietăţi probiotice, izolată din materii fecale de nou-născut, se
acumulează molecule solubile cu activitate inhibitorie asupra creşterii şi expresiei unor factori de
virulenţă solubili la tulpinile de S. aureus şi Ps. aeruginosa studiate.
31
6. Analiza expresiei genelor QS prin real-time PCR la tulpinile patogene crescute în prezenţa
supernatantului de probiotic, a arătat o scădere a nivelului de expresie a genei agr la tulpinile de S.
aureus şi a genelor lasI, lasR, rhlI şi rhlR de la tulpinile de Ps. aeruginosa.
7. În perspectivă, izolarea și purificarea prin HPLC a moleculelor inhibitorii conținute în
supernantantul tulpinilor de probiotice, va permite studiul influenței pe care aceste molecule îl
exercită asupra expresiei genelor de virulență şi al modalităţilor în care aceste molecule cu acțiune
anti - patogenică vor putea fi utilizate ca adjuvanţi în terapia unor infecții determinate de bacteriile
patogene oportuniste studiate.
8. Rezultatele prezentului studiu demonstrează posibilitatea unei noi abordări a privind
controlul unor infecţii severe prin interferarea unor compuşi cu activitate inhibitorie produşi de
tulpini de probiotice cu fenomenul de QS, având drept consecinţă atenuarea patogenităţii şi
virulenţei agenţilor patogeni studiaţi.
32
VII. Bibliografie selectivă 1. Willcox M. D. P., Zhu H., Conibear T. C. R., Hume E. B. H., Givskov M., Kjelleberg S.and Rice S. A. 2008. Role of quorum sensing by Pseudomonas aeruginosa in microbial keratitis and cystic fibrosis. Microbiology 154: 2184–2194. 2. Hentzer Morten and Givskov Michael. 2003. Pharmacological inhibition of quorum sensing for the treatment of chronic bacterial infections. The Journal of Clinical Investigation 112 (9): 1300 – 1307. 4. Bamberger D. M., and Boyd Sarah E. 2005. Management of Staphylococcus aureus Infections. Am Fam Physician 72: 2474-81. 5. Van Delden Christian and Iglewski Barbara H. 1998. Cell-to-Cell Signaling and Pseudomonas aeruginosa Infections. Emerging Infectious Diseases 4(4): 551-560. 6. Lazăr Veronica. 2003. Aderenţa microbiană. Editura Acedemiei Române, Bucureşti. ISBN: 973-27-0992-8. 7. Donlan R. M. 2001. Biofilms and Device-Associated Infections. Emerging Infectious Diseases, 7(2): 277-281. 8. Foster T. J. 2004. The Staphylococcus aureus “superbug”. The Journal of Clinical Investigation 114:1693–1696. 9. Peacock Sharon J., de Silva L., Lowy F. D. 2001. What determines nasal carriage of Staphylococcus aureus?Trends Microbiol. 9:605–610. 10. Haggar Axana. 2005. Interaction between Extracellular adherence protein (Eap) from Staphylococcus aureus and the human host. Stockholm, Sweden, ISBN 91- 7140-496 -1. 11. Gordon L. Archer. 1998. Staphylococcus aureus: A Well-Armed Pathogen. Clinical Infectious Diseases 26:1179–81. 12. Holtfreter Silva and Bröker Barbara M. 2005. Staphylococcal superantigens: do they play a role in sepsis? Arch. Immunol. Ther. Exp. 53:13–27. 13. Peacock Sharon J., Moore Catrin E., Justice Anita, Kantzanou Maria, Story Lisa, Mackie Kathryn, O’Neill Gael, Day N. P. J. 2002. Virulent Combinations of Adhesin and Toxin Genes in Natural Populations of Staphylococcus aureus. Infection and Immunity 70(9): 4987–4996. 14. Todar Kenneth. 2008. Staphylococcus aureus and Staphylococcal Disease. 15. Saunders N. A., Underwood A., Kearns Angela M. and Hallas G. 2004. A virulence-associated gene microarray: a tool for investigation of the evolution and pathogenic potential of Staphylococcus aureus. Microbiology 150: 3763–3771. 46. Simor Andrew E. 2001. Containing methicillin-resistant S aureus Surveillance, control, and treatment methods, Postgraduate Medicine 110 (4). 48. Leclercq Roland and Courvalin Patrice. 1991. Bacterial Resistance to Macrolide, Lincosamide, and Streptogramin Antibiotics by Target Modification. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 35 (7): 1267-1272. 49. SOM 208 Microbiology Syllabus Updated November 2005 Pseudomonas.
67. Vedel G. 2005. Simple method to determine -lactam resistance phenotypes in Pseudomonas aeruginosa using the disc agar diffusion test. Journal of Antimicrobial Chemotherapy 56: 657–664. 68. Strateva Tanya and Yordanov Daniel. 2009. Pseudomonas aeruginosa – a phenomenon of bacterial resistance. Journal of Medical Microbiology 58: 1133–1148.
33
71. Winzer, K., Hardie, K.R., and Williams, P. 2002. Bacterial cell-to-cell communication: Sorry, can't talk now - gone to lunch! Current Opinion in Microbiology 5: 216-222. 72. Smith R.S, Harris SG, Phipps R, Iglewski Barbara. 2002. The Pseudomonas aeruginosa quorum-sensing molecule N-(3- oxododecanoyl) homoserine lactone contributes to virulence and induces inflammation in vivo. J Bacteriol. 184:1132- 1139. 73. Visick Karen L. & Fuqua Clay. 2005. Decoding Microbial Chatter: Cell-Cell Communication in Bacteria. Journal of Bacteriology 187(16): 5507–5519. 74. Federle Michael J. and Bassler Bonnie L. 2003. Interspecies communication in bacteria. J. Clin. Invest. 112: 1291–1299. 75. Waters Christopher M. and Bassler Bonnie L. 2005. Quorum Sensing: Cell-to-Cell Communication in Bacteria. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 21:319–46. 83. Juhas M., Eberl L., Tümmler B. 2005. Quorum sensing: the power of cooperation in the world of Pseudomonas, Environmental Microbiology 4: 459–471. 85. Hentzer M., Riedel Kathrin, Rasmussen T. B., Heydorn Arne, Andersen Jens Bo, Parsek M. R., Rice S. A., Eberl L., Molin S., Høiby N., Kjelleberg S. and Givskov M. 2002. Inhibition of quorum sensing in Pseudomonas aeruginosa biofilm bacteria by a halogenated furanone compound. Microbiology, 148: 87–102. 86. Suga Hiroaki and Smith Kristina M. 2003. Molecular mechanisms of bacterial quorum sensing as a new drug target. Current Opinion in Chemical Biology 7:586–591. 88. Diggle S. P., Pierre C., Paul W. and Cámara M. 2006. Quinolone signalling in Pseudomonas aeruginosa: Old molecules, new perspectives. International Journal of Medical Microbiology 296: 83–91. 89. Hooi D., Barrie S. W., Bycroft W., Chhabra S. R., Williams P., and Pritchard D. I. 2004. Differential Immune Modulatory Activity of Pseudomonas aeruginosa Quorum-Sensing Signal Molecules. Infection and Immunity, 72(11): 6463–6470. 90. Pearson, J.P., Feldman, M., Iglewski, Barabara H., Prince, A. 2000. Pseudomonas aeruginosa Cell to Cell Signaling Is Required for Virulence in a Model of Acute Pulmonary Infection. Infect. Immun. 68, 4331-4334. 110. Novick Richard P. 2003. Autoinduction and signal transduction in the regulation of staphylococcal virulence. Molecular Microbiology 48 (6):1429–1449. 111. Traber Katrina E., Lee Elsie, Benson Sarah, Corrigan Rebecca, Cantera Mariela, Shopsin Bo and Novick R. P. 2008. agr function in clinical Staphylococcus aureus isolates. Microbiology 154: 2265–2274. 117. Tseng Ching Wen, Zhang Shuping, and Stewart G. C. 2004. Accessory Gene Regulator Control of Staphyloccoccal Enterotoxin D Gene Expression. Journal of Bacteriology 186(6): 1793–1801. 126. Smith R. S. and Iglewski Barbara H. 2003. Pseudomonas aeruginosa quorum sensing as a potential antimicrobial target. J. Clin. Invest. 112 (10): 1460-1465. 131. Sanders Mary Ellen, Gibson G., Harsharnjit G. S., Guarner F., Gilliland S. E., Todd R. Klaenhammer, Gregor Reid, Gerald W. Tannock, Harold Swaisgood. 2007. Probiotics: Their Potential to Impact Human Health. Council For Agricultural Science And Technology, No. 36.